Lwhklab 2 4 3

微菌治療在感染性消化疾病之臨床應用

消化道是人體與外界環境接觸最緊密的器官之一,在表面積300平方公尺的粘膜下,駐紮人體70%的免疫細胞,防止伴隨食物進入體內的病原感染宿主,同時監管長居在消化道的上千種微生物,包含細菌、黴菌與病毒,構成了複雜的人體-微菌叢的共生體系。除了用來抵禦微生物的免疫系統外,消化道粘膜對抗病原的屏障還包括胃酸、膽鹽、消化液、黏液層與抗菌胜肽等。不過,面對外來病原菌的第一線士兵並非人體的免疫細胞、而是常駐於消化道數以兆計的共生菌,這些與人類和平共處的腸道微生物,其實是人體對抗病從口入的第一道防線。

微菌治療在感染性消化疾病之臨床應用

一旦病原菌經由攝食進入體內,通過胃酸與膽鹽的考驗,就可能進一步定殖、增生、釋放毒素,甚至成為優勢菌種侵犯黏膜上皮細胞,導致消化道感染、發炎。此時,腸道內的共生菌為維護腸生態穩定,發揮抵禦病原菌的定殖抗性 (colonization resistance) 作用,便在防止消化道感染扮演了重要角色。腸道微菌叢可透過直接與間接的定植抗性機制,阻擋病原菌在腸道中擴張勢力,直接發揮定植抗性的方式如 (1)與病原菌競爭營養與空間。(2)透過產生細菌素 (bacteriocin) 、第六型分泌系統 (Type VI Secretory System, T6SS) 等機制毒殺入侵的病原菌。(3)形成短鏈脂肪酸、吲哚與次級膽酸等特殊小分子代謝物來抑制病原菌生長。腸道微菌叢間接抵抗病原菌的定植抗性機制則包括 (1)促進杯狀細胞產生黏液形成粘膜屏障。(2)刺激腸上皮細胞消耗氧氣,維持不利病原菌增生的絕對厭氧環境。(3)誘發腸道免疫反應。倘若微菌叢進入失衡狀態 (Dysbiosis) ,將會導致定植抗性失能或缺陷,使得病原菌入侵與感染的機會⼤幅增加。因此維持腸道微菌叢的健康與平衡,在感染性消化疾病的預防與治療上扮演重要角色。以下挑選幾項較具潛力的感染性消化疾病微菌治療 (microbiome-based therapeutics),介紹其發展現況與未來展望。

困難梭狀桿菌 (Clostridioides difficile) 是一種引起嚴重腸道感染的細菌,通常發生在治療其他感染症使用抗生素之後,因此致病機轉被認為與抗生素所導致的微菌叢失衡有關。CDI的症狀包括嚴重的腹瀉,腹部疼痛,甚至可能導致生命威脅的炎症和腸道損傷。關於 CDI 的微菌治療,近⼗年發展相當快速。最初,困難梭狀桿菌感染 (CDI) 的治療主要依賴抗生素,包括廣效Vancomycin,Metronidazole以及較新的Fidoxomycin。不過,由於抗生素同時也會破壞腸道微菌叢、降低定植抗性,使患者容易再次感染 (recurrent CDI, rCDI),因此需要更好的治療方法。近年來,糞菌移植(Fecal Microbiota Transplantation, FMT)已被證實是治療rCDI的有效手段。透過將健康人的糞便樣本移植到患者的腸道,FMT能幫助患者恢復健康的腸道微菌叢,降低CDI治療後的復發率。許多臨床證據已顯示,抗生素療程後給予FMT的治療效果明顯優於傳統抗生素治療。儘管FMT在治療rCDI方面取得了驚人的成功,其具體機制仍在研究之中。一般認為,透過FMT導入多樣性高的健康微菌叢,能夠與困難梭狀桿菌競爭營養物質和生存空間,從而抑制其生長。亦有研究認為FMT對於rCDI的療效來自於噬菌體與微菌叢的代謝物。近十年來,全世界使用FMT治療rCDI的臨床試驗蓬勃發展,實施的途徑包括透過鼻腸管與胃鏡從上消化道投予,或是使用的灌腸和大腸鏡的方式從下消化道投予,這些途徑均展現顯著療效。在美國, FMT 過去多在 FDA 的IND 試驗性監管辦法下執⾏,不過已被許多醫療指引列入rCDI 的標準治療⽅式,甚⾄納入聯邦醫療保險給付項⽬。直到2022年,美國FDA核准了第一個治療rCDI的FMT新藥Rebyota (Rebiotix),透過灌腸方式執行,在rCDI的臨床三期試驗取得70.6%的改善效果,相對於安慰劑組57.5%的效果增加了14.1%的療效。2023年,FDA核准了第一個經由口服的FMT新藥VOWST (Seres Therapeutics),將健康人糞便經由加工處理留下厚壁菌門 (Firmicutes) 的孢子,製成口服膠囊的三天療程,在rCDI臨床三期試驗取得88%的治療效果,相較於安慰劑組60%的效果增加了28%的療效。另外,Rebyota與VOWST在短中期的不良反應,則與安慰劑組沒有顯著差異,長期安全性則需要進一步追蹤。不過值得注意的是,目前FDA核可Rebyota與VOWST的適應證,僅限於治療rCDI,並不適用於primary CDI。雖有研究顯示,在首次感染CDI時輔以FMT治療,治療成效維持的比單用Vancomycin來得好,不過仍需累積更多臨床證據支持。

微菌治療除了在復發性困難梭菌感染取得重要突破外,另一個與消化道感染相關,具發展潛力的疾病為造血幹細胞移植 (Hematopoietic Stem Cell Transplantation, HSCT) 後所併發的移植物抗宿主病 (Graft versus Host Disease,GvHD)。由於HSCT的病人通常會接受高劑量的化療藥物和/或全身放射線治療 (Conditioning regimen),並使用強效廣譜抗生素預防白血球低下所造成的感染。因此,HSCT除了造成腸粘膜發炎外,腸道微菌叢亦會受到嚴重破壞導致多樣性下降、病原菌比例升高 (dysbiosis)。在這種情況下,腸道中的損傷相關分子模式 (damage associated molecular patterns, DAMPs) 與病原相關分子模式 (Pathogen associated molecular patterns, PAMPs) 容易通過受損的腸粘膜屏障進入體內,使移植的T 細胞活化產生過度免疫反應,反過來攻擊宿主的腸粘膜細胞 (GvHD),進一步惡化腸道發炎與細菌位移 (bacteria translocation) 導致一種惡性循環的現象。由於微菌叢失衡與HSCT後所發生的GvHD、感染症與死亡率均與有密切關聯,顯示微菌治療在此領域的發展潛力,特別是在傳統免疫抑制藥物效果不佳的情況。目前已有一些小規模的臨床試驗顯示,FMT可幫助減緩GvHD的症狀,不過實際臨床效益與安全性問題有待進一步研究釐清。

胃幽門螺旋桿菌(Helicobacter pylori,H. pylori)是最常見的感染性消化疾病之一,可能導致胃潰瘍、十二指腸潰瘍、胃癌等嚴重的消化系統疾病。傳統上,H. pylori的根除治療包括使用兩種以上的抗生素和一種質子幫浦抑製劑。然而,隨著H. pylori對抗生素的抗藥性日益增強,抗生素治療有效性逐漸下降,發展新的輔助治療方式有其需求。此外,H. pylori根除治療的抗生素會擾亂微菌叢,導致腸胃不適、腹瀉等副作用。因此,使用益生菌成了增加H. pylori根除率與改善副作用的選項之一。關於益生菌對於H. pylori的輔助治療過去已累積不少研究,不過大多數為中小型臨床試驗,系統性回顧與統合分析顯示益生菌可能改善H. pylori的根除率與副作用,不過亦可能是報導性偏差,仍需大型隨機分派研究支持其臨床效益。此外,哪種益生菌株、何種劑量以及透過何種機制對於H. pylori感染的輔助治療產生效果,亦需進一步釐清。雖然臨床證據尚未明確,不過益生菌仍為改善H. pylori根除率和降低副作用方面,提供了一種新的可能性。

壞死性腸炎 (Necrotizing enterocolitis, NEC) 是一種發生在新生兒,特別是早產嬰兒中的重大腸道疾病,其特點是腸壁的部分區域發生壞死,是早產兒發生敗血症甚至死亡的重要原因之一。NEC發生的病因目前尚未完全清楚,不過一般認為與下列四種機轉有關:(1)TLR4受體的過度表現 (2)腸道微菌叢失調 (3)腸繫膜缺血 (4)羊水訊息中斷導致腸道發育不全。

早產兒由於腸上皮細胞的TLR4表現量高,接受腸道微菌叢PAMPs刺激的反應較強,加上新生兒腸道厭氧環境尚未穩定,早期腸道微菌叢多樣性較低,因此容易定植具兼性厭氧特質的葛蘭氏陰性菌,腸道中過多的脂多醣 (Lipopolysaccharide,LPS) 容易誘發腸上皮細胞TLR4下游反應,導致腸粘膜細胞發炎壞死與腸粘膜屏障破壞,腸內細菌移行進入體內,造成敗血症。目前已知預防早產兒併發NEC的方式並不多,給予母乳寡糖與益生菌是較多臨床研究支持的方法,其中母乳寡糖可作為益生質幫助嬰兒微菌叢建立和調節免疫,部分母乳寡糖可作為TLR4抑制劑,減少早產兒腸道發炎與刺激腸上皮細胞分泌黏液。給予早產兒服用益生菌則是預防NEC累積最多臨床試驗的方式。許多系統性回顧與綜合分析的結果皆顯示益生菌對於早產兒NEC的預防效果 (RR 0.54, 95% CI 0.46 to 0.65),不過由於各個試驗所使用益生菌菌株與配方不盡相同,以及多半缺乏盲性作業 (blinded procedure) 的敘述,可信度仍被Cochrane Review評比為中低級。因此,早產兒是否應常規給予益生菌預防NEC,仍須較多大規模高品質的臨床試驗,以確定最適合的益生菌種類,最佳的服用時機和劑量,以及可能的副作用和長期效應。

急性腸胃炎 (acute gastroenteritis, AGE) 是最常見的臨床病症之一,絕大多數都是經由病毒感染,導致腸粘膜細胞發炎產生腹痛與上吐下瀉等症狀。成年人的腸胃炎通常持續3-5天,給予症狀緩解藥物後,多半能獲得改善。相較之下,嬰幼兒罹患急性腸胃炎症狀較嚴重,甚至可能發生脫水、電解質失衡的情形,需要住院治療的機率較高,因而造成繁重的照護負擔。補充益生菌常被認為能降低嬰幼兒AGE的發生率,不過一直缺乏大規模高品質的臨床試驗證實。2017年,一項在印度進行多達4556人的雙盲、隨機分派臨床試驗發表在Nature期刊,顯示服用植物乳酸桿菌 (Lactobacillus plantarum ATCC-202195) 與果寡糖能有效預防印度偏鄉地區的嬰幼兒發生敗血症的機率。這項研究引起了歐美學者的注意,在美國與加拿大分別啟動了兩個多中心雙盲、隨機分派臨床試驗,針對益生菌是否能預防嬰幼兒AGE進展至中重度進行研究。然而這兩個發表在NEJM、分別使用單方 (Lactobacillus rhamnosus GG) 與複方 (Lactobacillus rhamnosus R0011 and L. helveticus R0052) 益生菌的大型臨床試驗,均顯示益生菌介入無法降低嬰幼兒AGE進展至中重度與住院機率。不過,印度與北美三個大型研究所使用的益生菌菌株與劑量均不相同,試驗地域、實驗設計與臨床觀察結果亦有所區別。因此,未來若要進行相關試驗,可能需在篩選益生菌株進入臨床試驗時,於機制和適應症方面進行更完整的研究,以增加試驗成功的機會。

細菌不只致病還能用來治病的概念已非天方夜譚,近年微菌治療在感染性消化疾病的發展迅速,特別是FMT在rCDI的臨床應用,已達到FDA核准的里程碑。隨著研究對於各種疾病微菌叢失衡的定義與機制越來越清晰,相信未來會有更多微菌治療方法投入臨床應用。

專家學者:吳偉愷/雷文虎克共同創辦人、國立臺灣大學醫學院附設醫院醫學研究部主治醫師

原文刊載於消化系醫學會第44屆教育研討會講義

  1. Alby K, Nachamkin I. Gastrointestinal Infections. Microbiol Spectr. 2016;4(3).
  2. Libertucci J, Young VB. The role of the microbiota in infectious diseases. Nat Microbiol. 2019;4(1):35-45.
  3. Caballero-Flores G, Pickard JM, Nunez G. Microbiota-mediated colonization resistance: mechanisms and regulation. Nat Rev Microbiol. 2023;21(6):347-60.
  4. Leffler DA, Lamont JT. Clostridium difficile infection. N Engl J Med. 2015;372(16):1539-48.
  5. Smits WK, Lyras D, Lacy DB, Wilcox MH, Kuijper EJ. Clostridium difficile infection. Nat Rev Dis Primers. 2016;2:16020.
  6. van Nood E, Vrieze A, Nieuwdorp M, Fuentes S, Zoetendal EG, de Vos WM, et al. Duodenal infusion of donor feces for recurrent Clostridium difficile. N Engl J Med. 2013;368(5):407-15.
  7. Britton RA, Young VB. Role of the intestinal microbiota in resistance to colonization by Clostridium difficile. Gastroenterology. 2014;146(6):1547-53.
  8. Rupnik M. Toward a true bacteriotherapy for Clostridium difficile infection. N Engl J Med. 2015;372(16):1566-8.
  9. Schnizlein MK, Young VB. Capturing the environment of the Clostridioides difficile infection cycle. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2022;19(8):508-20.
  10. Hvas CL, Dahl Jorgensen SM, Jorgensen SP, Storgaard M, Lemming L, Hansen MM, et al. Fecal Microbiota Transplantation Is Superior to Fidaxomicin for Treatment of Recurrent Clostridium difficile Infection. Gastroenterology. 2019;156(5):1324-32 e3.
  11. Khanna S, Assi M, Lee C, Yoho D, Louie T, Knapple W, et al. Efficacy and Safety of RBX2660 in PUNCH CD3, a Phase III, Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled Trial with a Bayesian Primary Analysis for the Prevention of Recurrent Clostridioides difficile Infection. Drugs. 2022;82(15):1527-38.
  12. Feuerstadt P, Louie TJ, Lashner B, Wang EEL, Diao L, Bryant JA, et al. SER-109, an Oral Microbiome Therapy for Recurrent Clostridioides difficile Infection. N Engl J Med. 2022;386(3):220-9.
  13. Sims MD, Khanna S, Feuerstadt P, Louie TJ, Kelly CR, Huang ES, et al. Safety and Tolerability of SER-109 as an Investigational Microbiome Therapeutic in Adults With Recurrent Clostridioides difficile Infection: A Phase 3, Open-Label, Single-Arm Trial. JAMA Netw Open. 2023;6(2):e2255758.
  14. Khanna S, Sims M, Louie TJ, Fischer M, LaPlante K, Allegretti J, et al. SER-109: An Oral Investigational Microbiome Therapeutic for Patients with Recurrent Clostridioides difficile Infection (rCDI). Antibiotics (Basel). 2022;11(9).
  15. Khoruts A, Staley C, Sadowsky MJ. Faecal microbiota transplantation for Clostridioides difficile: mechanisms and pharmacology. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2021;18(1):67-80.
  16. Baunwall SMD, Andreasen SE, Hansen MM, Kelsen J, Hoyer KL, Ragard N, et al. Faecal microbiota transplantation for first or second Clostridioides difficile infection (EarlyFMT): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet Gastroenterol Hepatol. 2022;7(12):1083-91.
  17. Allegretti JR. Should faecal microbiota transplantation be used earlier in the treatment framework? Lancet Gastroenterol Hepatol. 2022;7(12):1062-3.
  18. Malard F, Holler E, Sandmaier BM, Huang H, Mohty M. Acute graft-versus-host disease. Nat Rev Dis Primers. 2023;9(1):27.
  19. Shono Y, van den Brink MRM. Gut microbiota injury in allogeneic haematopoietic stem cell transplantation. Nat Rev Cancer. 2018;18(5):283-95.
  20. van Lier YF, Davids M, Haverkate NJE, de Groot PF, Donker ML, Meijer E, et al. Donor fecal microbiota transplantation ameliorates intestinal graft-versus-host disease in allogeneic hematopoietic cell transplant recipients. Sci Transl Med. 2020;12(556).
  21. Eshel A, Sharon I, Nagler A, Bomze D, Danylesko I, Fein JA, et al. Origins of bloodstream infections following fecal microbiota transplantation: a strain-level analysis. Blood Adv. 2022;6(2):568-73.
  22. Homan M, Orel R. Are probiotics useful in Helicobacter pylori eradication? World J Gastroenterol. 2015;21(37):10644-53.
  23. Liang B, Yuan Y, Peng XJ, Liu XL, Hu XK, Xing DM. Current and future perspectives for Helicobacter pylori treatment and management: From antibiotics to probiotics. Front Cell Infect Microbiol. 2022;12:1042070.
  24. Ji J, Yang H. Using Probiotics as Supplementation for Helicobacter pylori Antibiotic Therapy. Int J Mol Sci. 2020;21(3).
  25. Dang Y, Reinhardt JD, Zhou X, Zhang G. The effect of probiotics supplementation on Helicobacter pylori eradication rates and side effects during eradication therapy: a meta-analysis. PLoS One. 2014;9(11):e111030.
  26. Zhang MM, Qian W, Qin YY, He J, Zhou YH. Probiotics in Helicobacter pylori eradication therapy: a systematic review and meta-analysis. World J Gastroenterol. 2015;21(14):4345-57.
  27. Lu M, Yu S, Deng J, Yan Q, Yang C, Xia G, et al. Efficacy of Probiotic Supplementation Therapy for Helicobacter pylori Eradication: A Meta-Analysis of Randomized Controlled Trials. PLoS One. 2016;11(10):e0163743.
  28. Chen MJ, Chen CC, Huang YC, Tseng CC, Hsu JT, Lin YF, et al. The efficacy of Lactobacillus acidophilus and rhamnosus in the reduction of bacterial load of Helicobacter pylori and modification of gut microbiota-a double-blind, placebo-controlled, randomized trial. Helicobacter. 2021;26(6):e12857.
  29. Healy DB, Ryan CA, Ross RP, Stanton C, Dempsey EM. Clinical implications of preterm infant gut microbiome development. Nat Microbiol. 2022;7(1):22-33.
  30. Underwood MA, Mukhopadhyay S, Lakshminrusimha S, Bevins CL. Neonatal intestinal dysbiosis. J Perinatol. 2020;40(11):1597-608.
  31. Duess JW, Sampah ME, Lopez CM, Tsuboi K, Scheese DJ, Sodhi CP, et al. Necrotizing enterocolitis, gut microbes, and sepsis. Gut Microbes. 2023;15(1):2221470.
  32. Oliphant K, Claud EC. Early probiotics shape microbiota. Nat Microbiol. 2022;7(10):1506-7.
  33. Nino DF, Sodhi CP, Hackam DJ. Necrotizing enterocolitis: new insights into pathogenesis and mechanisms. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2016;13(10):590-600.
  34. Hackam DJ, Sodhi CP. Bench to bedside – new insights into the pathogenesis of necrotizing enterocolitis. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2022;19(7):468-79.
  35. Athalye-Jape G, Rao S, Patole S. Effects of probiotics on experimental necrotizing enterocolitis: a systematic review and meta-analysis. Pediatr Res. 2018;83(1-1):16-22.
  36. Beck LC, Masi AC, Young GR, Vatanen T, Lamb CA, Smith R, et al. Strain-specific impacts of probiotics are a significant driver of gut microbiome development in very preterm infants. Nat Microbiol. 2022;7(10):1525-35.
  37. Panigrahi P, Parida S, Nanda NC, Satpathy R, Pradhan L, Chandel DS, et al. A randomized synbiotic trial to prevent sepsis among infants in rural India. Nature. 2017;548(7668):407-12.
  38. Schnadower D, Tarr PI, Casper TC, Gorelick MH, Dean JM, O’Connell KJ, et al. Lactobacillus rhamnosus GG versus Placebo for Acute Gastroenteritis in Children. N Engl J Med. 2018;379(21):2002-14.
  39. Freedman SB, Williamson-Urquhart S, Farion KJ, Gouin S, Willan AR, Poonai N, et al. Multicenter Trial of a Combination Probiotic for Children with Gastroenteritis. N Engl J Med. 2018;379(21):2015-26.
  40. LaMont JT. Probiotics for Children with Gastroenteritis. N Engl J Med. 2018;379(21):2076-7.
  41. Yelin I, Flett KB, Merakou C, Mehrotra P, Stam J, Snesrud E, et al. Genomic and epidemiological evidence of bacterial transmission from probiotic capsule to blood in ICU patients. Nat Med. 2019;25(11):1728-32.